TeSR™多能干细胞培养基
人类胚胎干细胞和iPS细胞重编程、维持和分化的无馈源培养基
TeSR™系列无进料介质是使用严格预筛选的材料生产的，以确保最高水平的批对批一致性和实验可重复性，使您可以最大限度地减少研究中的变化。每种介质都是基于已发表的配方1-3来自James Thomson实验室，并允许研究人员维持高质量的人类多能干细胞（hPSC）培养系统。这些产品提供了一个连续的基于TeSR™培养基的工作流程，从诱导多能干细胞（iPS）的产生，到胚胎干细胞（ES）和iPS细胞的维持、分化和冷冻保存。
eTeSR™
配方:
无血清
应用程序:
人类胚胎干细胞和iPS细胞的无喂食维持和扩增，优化单细胞传代。
特性/优点:
- 增强的缓冲，稳定的FGF2和优化的代谢物支持细胞质量，同时允许替代喂养时间表
- 在进行常规单细胞传代时，提高hPSC培养物的遗传稳定性
- 增加细胞产量，同时减少与单细胞传代或高密度培养相关的压力
- 消除自发分化
mTeSR™+
配方:
无血清
应用程序:
人类胚胎干细胞和iPS细胞的无喂食维持和扩增。
特性/优点:
- 增强的缓冲和稳定的FGF2支持细胞质量，同时允许交替喂养时间表
- 支持卓越的培养形态和细胞生长特性
- 与CloneR™一起使用可提高单细胞存活率
- 完全兼容已建立的基因组编辑和分化协议
- 在相关cgmp下生产，实现从基础研究到药物和细胞治疗开发的无缝过渡。
TeSR™-AOF
配方:
无血清，无动物来源
应用程序:
人类胚胎干细胞和iPS细胞的无喂食维持和扩增。
特性/优点:
- 通过选择不含动物原料的培养基来降低辅助材料选择的风险
- 支持高质量的菌落形态，牢固的附着和细胞扩增
- 稳定的组件，包括FGF2，支持高细胞质量，同时允许交替进料时间表
mTeSR™1
配方:
无血清
应用程序:
人类胚胎干细胞和iPS细胞的无喂食维持和扩增。
特性/优点:
- 用于在60多个国家维持数千个人类胚胎干细胞和多能干细胞系长达10年之久
- 含有预先筛选的BSA稳定培养基，帮助脂质/营养运输，并保护细胞毒素和压力的培养
- 维持介质的选择为许多已发表的方案谱系特异性分化的人造血干细胞
mTeSR™1无酚红
配方:
无血清
应用程序:
人类胚胎干细胞和iPS细胞的无喂食维持和扩增。
特性/优点:
- 用于在60多个国家维持数千个人类胚胎干细胞和多能干细胞系长达10年之久
- 含有预先筛选的BSA稳定培养基，帮助脂质/营养运输，并保护细胞毒素和压力的培养
- 维持介质的选择为许多已发表的方案谱系特异性分化的人造血干细胞
RSeT™无进料培养基
配方:
无血清
应用程序:
诱导的人类胚胎干细胞和iPS细胞在缺氧条件下恢复到naïve-like状态并维持在naïve-like状态。
特性/优点:
- 饲料独立培养系统减少了内在的可变性，成本和饲料准备的负担
- 无血清制剂含有预先筛选的高质量成分，以获得可重复的结果
- 促进高效地恢复到naïve-like状态，稳定的圆顶形态，naïve基因表达谱，低水平的自发分化，而不需要外源基因
- 不含bFGF维持naïve-like多能性
崩溃细节
cGMP hPSC维持培养基
期待你的hPSC研究的临床。我们稳定的无饲料hPSC维持培养基，mTeSR™+在经过认证的质量管理体系下，按照相关的cgmp进行生产和检测。更多信息请访问STEMCELL >
mTeSR™Plus与其他维护培养介质有何不同？
mTeSR™Plus是基于mTeSR™1的配方设计的。该版本包含稳定的成分，包括FGF2，与其他介质不同，它提供增强的缓冲，以减少介质酸化，从而在跳过介质变化期间保持细胞质量。
优点:
- 增强的缓冲和稳定的FGF2支持细胞质量，同时允许交替喂养时间表
- 支持卓越的培养形态和细胞生长特性
- 与CloneR™一起使用可提高单细胞存活率
- 完全兼容已建立的基因组编辑和分化协议
- 在相关cgmp下生产，实现从基础研究到药物和细胞治疗开发的无缝过渡
了解有关mTeSR™Plus的更多信息，并在您自己的实验室中试用它。
崩溃细节
胚胎干细胞和iPS细胞系的持续分化可能具有挑战性。我们推荐我们的STEMdiff™产品套件的最佳和可复制的差异化。
CryoStor®CS10
配方:
cGMP-Manufactured;动物部分流;无血清
应用程序:
人胚胎干细胞和iPS细胞的低温保存。
特性/优点:
- 动物部分流
- 维持高细胞活力，并在长期储存后最大限度地恢复细胞
崩溃细节
ReproTeSR™介质重编程
配方:
无血清;Xeno-Free
应用程序:
从成纤维细胞、尿源性细胞和血源性细胞（如CD34+或红系前体细胞）生成人类iPS细胞。
特性/优点:
- 定义，无进料配方促进可重复高效的人类iPS细胞生成
- 具有高质量诱导多能干细胞样形态的大集落的迅速出现，为鉴定和亚克隆提供了便利，便于建立诱导多能干细胞系
- 在重编程之前和iPS细胞生成之后，与STEMCELL产品无缝集成，以维持和分化
TeSR™-E7™重编程介质
配方:
无血清;Xeno-Free;动物部分流
应用程序:
在不使用喂食器的情况下生成人类iPS细胞。
特性/优点:
- 预先筛选的成分确保高质量的iPS细胞菌落形态，便于鉴定和改进手动选择
- 减少分化和成纤维细胞生长可以快速建立均匀的iPS细胞培养
- 无馈线，定义配方促进可重复高效的人类iPS细胞生成
红细胞祖细胞重编程试剂盒
配方:
动物部分流;无血清
应用程序:
外周血中红细胞祖细胞的分离和扩增及其随后重编程为iPS细胞。
特性/优点:
- 优化的富集，扩增和重编程红细胞祖细胞扩增外周血样本
- 与传统的hES细胞培养基相比，提高了iPS细胞的重编程效率和集落频率
- 具有高质量iPS细胞样形态的大菌落迅速出现，有利于鉴定和亚克隆
- 与TeSR™无缝集成STEMdiff™用于iPS细胞系下游维持和分化的产品
CD34+祖细胞重编程试剂盒
配方:
无血清
应用程序:
外周血CD34+祖细胞的分离和扩增及其随后重编程为iPS细胞。
特性/优点:
- 优化了外周血扩增的CD34+祖细胞的富集、扩增和重编程
- 与传统的hES细胞培养基相比，提高了iPS细胞的重编程效率和集落频率
- 具有高质量iPS细胞样形态的大菌落迅速出现，有利于鉴定和亚克隆
- 与TeSR™无缝集成STEMdiff™用于iPS细胞系下游维持和分化的产品
ReproRNA™-OKSGM
应用程序:
将体细胞（如成纤维细胞）重编程为iPS细胞。
特性/优点:
- 非病毒，非积分载体系统
- 自我复制载体只需要一次转染
- 向量包含所有重编程因素
- 成纤维细胞重编程效率与仙台病毒相当
崩溃细节
mTeSR™3 d
配方:
无血清
应用程序:
未分化的人胚胎干细胞和iPS细胞在三维悬浮培养中的扩增和放大。
特性/优点:
- 基于mTeSR™1，优化了hPSC放大配方
- 饲料批量培养系统，简化工作流程
- 放大到109在2 - 3周内获得高质量的未分化的人造血干细胞
TeSR™e8™3 d
配方:
动物部分流
应用程序:
未分化的人胚胎干细胞和iPS细胞在三维悬浮培养中的扩增和放大。
特性/优点:
- 基于TeSR™-E8™，针对低蛋白、无动物组分条件下的hPSC放大进行优化
- 饲料批量培养系统，简化工作流程
- 放大到109在2 - 3周内获得高质量的未分化的人造血干细胞
TeSR™-AOF 3 d
配方:
动物Origin-Free
应用程序:
未分化的人胚胎干细胞和iPS细胞在三维悬浮培养中的扩增和放大。
特性/优点:
- 基于TeSR™-AOF，优化了hPSC放大，不需要动物原料到二级制造水平
- 饲料批量培养系统，简化工作流程
- 2 - 3周内可扩增出109个高质量、未分化的人造血干细胞
崩溃细节
细胞因子在TeSR™培养基中的功能及其对hPSC培养的影响
- 促进细胞存活和增殖，同时也抑制分化到特定的谱系（如心肌细胞）。它存在于我们所有的TeSR™介质中（除了TeSR™-E5）。
- 是hPSC自我更新和扩增的重要细胞因子，存在于TeSR™重编程（ReproTeSR™，TeSR™-E7™）和维持（,,）培养基中。
- 抑制重编程，对维持hPSC多能性很重要。tgf - β存在于所有三种TeSR™维持介质中（,,）。
品牌的历史
2006年，威斯康辛大学詹姆斯·汤姆森博士实验室的Tenneille Ludwig博士和他的同事们报道了一种新的胚胎干细胞系在完全确定的无饲料培养条件下的衍生。1,2这种首次定义的培养基显著改善了人类胚胎干细胞培养，并以mTeSR™1的名称发布，成为发表最广泛的无饲料培养基，在1100多篇同行评审的出版物中使用。随后，基于相同配方的无xeno培养基作为TeSR™2释放。2012年，一种名为TeSR™-E8™的新型低蛋白维持培养基发布。基于E8配方3由James Thomson博士实验室的陈国凯博士发表，TeSR™-E8™仅包含所需的最基本的培养基成分，从而为维持hPSCs提供了一种更简单的培养基。
最近，mTeSR™Plus（2019）和TeSR™-AOF(动物源性；2021)已作为STEMCELL Technologies的TeSR™产品线的一部分发布。mTeSR™-Plus是一种无进料的维护培养介质，允许无周末的时间表，与mTeSR™1的不同之处在于其增强的pH缓冲。TeSR™-AOF保证在二级制造阶段不含人类和动物材料，为用户提供了围绕病毒安全的安心。mTeSR™Plus、TeSR™-AOF和mTeSR™1均按照相关cgmp生产。
除了TeSR™维持培养基外，STEMCELL Technologies还开发了基于TeSR™的培养基，以支持多能干细胞研究工作流程的其他方面，包括针对成纤维细胞重编程（TeSR™-E7™）、血细胞和成纤维细胞重编程（ReproTeSR™）、分化（TeSR™-E6和TeSR™-E5）和冷冻保存（mFreSR™和FreSR™-S）优化的培养基。
科学资源
关键应用程序
人类iPS细胞毒性试验
Jagtap S, Meganathan K, Gaspar J, Wagh V, Winkler J， Hescheler J和Sachinidis A (2011)；阿拉伯糖胞嘧啶在人胚胎干细胞多系分化过程中诱导外胚层并抑制中胚层表达[J]。第162卷，第1743-56页。
Kleinstreuer NC, Smith AM, West PR, Conard KR, Fontaine BR, weirhauptman AM, Palmer JA, Knudsen TB, Dix DJ， Donley ELR和Cezar GG (2011)，利用人类胚胎干细胞和代谢组学鉴定一组毒素化学物质的发育毒性途径，毒理学与应用药理学。2011年11月。卷257(1)，第111-121页。
梁鹏，兰芳，李AS，龚涛，Sanchez-Freire V，王勇，Diecke S, salam K, Knowles JW，王鹏军，Nguyen PK, Bers DM, Robbins RC，吴锦江（2013）。利用人类诱导多能干细胞衍生的心肌细胞文库进行药物筛选，揭示了疾病特异性的心脏毒性模式。循环。， 2013年4月。第127卷（16），第1677-1691页。
刘健，孙宁，布鲁斯·马，吴锦江，Butte MJ（2012）。多能干细胞衍生心肌细胞的原子力力学生物学， PLoS ONE。， 2012年5月。第7卷(5)，页e37559。
梅塔A，钟云英，吴安，Iskandar F, Atan S，魏辉，Dusting G，孙伟，黄平，沈伟（2011），无病毒诱导多能干细胞衍生的人心肌细胞的药理学反应心血管研究。， 2011年9月。第91卷(4)，第577-586页。
Kleinstreuer NC, Smith AM, West PR, Conard KR, Fontaine BR, weirhauptman AM, Palmer JA, Knudsen TB, Dix DJ， Donley ELR和Cezar GG (2011)，利用人类胚胎干细胞和代谢组学鉴定一组毒素化学物质的发育毒性途径，毒理学与应用药理学。2011年11月。卷257(1)，第111-121页。
梁鹏，兰芳，李AS，龚涛，Sanchez-Freire V，王勇，Diecke S, salam K, Knowles JW，王鹏军，Nguyen PK, Bers DM, Robbins RC，吴锦江（2013）。利用人类诱导多能干细胞衍生的心肌细胞文库进行药物筛选，揭示了疾病特异性的心脏毒性模式。循环。， 2013年4月。第127卷（16），第1677-1691页。
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分化为造血细胞
Brown ME, Rondon E, Rajesh D, Mack A, Lewis R, Feng X, Zitur LJ， leish RD和Nuwaysir EF (2010)，从人外周血T淋巴细胞中提取诱导多能干细胞， PLoS One。第5卷，第11373页。
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刘建军，刘建军，刘建军，刘建军，刘建军（2011）；从hESCs和hiPSCs中生成体外造血祖细胞和分化血细胞的明确、无饲料、无血清系统， PLoS ONE。2011年3月。第6卷(3)，第17829页。
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分化为最终的内胚层
Hannoun Z, Fletcher J, Greenhough S, Medine C, Samuel K, Sharma R, Pryde A, Black JR, Ross JA, Wilmut I, Iredale JP and Hay DC (2010)；条件培养基与无血清培养基在人胚胎干细胞培养与分化中的比较，细胞重编程。第12卷，133-40页。
Jaramillo M和Banerjee I (2012)；内皮细胞共培养介导人胚胎干细胞向胰腺胰岛素生成细胞的定向分化成熟可视化实验杂志。2012年3月。(61)
Miki T， Ring A和Gerlach J (2011)，三维动态灌注培养条件促进人胚胎干细胞肝脏分化组织工程C部分方法。第17卷，557-68页。
Mou H, Zhao R, Sherwood R, Ahfeldt T, Lapey A, Wain J, Sicilian L, Izvolsky K, Lau FH, Musunuru K, Cowan C, Rajagopal J (2012)；从小鼠ESCs和患者特异性囊性纤维化iPSCs中生成多能肺和气道祖细胞，细胞干细胞。2012年4月。第10卷(4)，385-397页。
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放大和生物反应器培养
Krawetz R, Taiani JT, Liu S， b孟G， Li X, Kallos MS and Rancourt DE (2010)；多能性人胚胎干细胞在搅拌悬浮生物反应器中的大规模扩增组织工程C部分：方法。， 2010年8月。第16卷(4)，第573-582页。
吴志伟、陈爱康、莫燕、陈晓、林佑明、陈安、周宝华及reveny S (2009)，人胚胎干细胞的长期微载体悬浮培养干细胞研究。， 2009年5月。第2卷(3)，第219-230页。
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Zweigerdt R, Olmer R, Singh H, Haverich A and Martin U (2011)；人多能干细胞在悬浮培养中的规模化扩增《自然协议》。第6卷(5)，689-700页。
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分化为心肌细胞
Elliott DA, Braam SR, Koutsis K, Ng ES, Jenny R, Lagerqvist EL, Biben C, Hatzistavrou T, Hirst CE, Yu QC, Skelton RJ, Ward-van oostard D, Lim SM, Khammy O, Li X, Hawes SM, Davis RP, Goulburn AL, Passier R, Prall OW, Haynes JM, Pouton CW, Kaye DM, mumny CL， Elefanty AG和Stanley EG (2011)，NKX2-5(eGFP/w) hESCs用于分离人心脏祖细胞和心肌细胞Nat方法。第8卷，第1037-40页。
Hazeltine LB, Simmons CS, Salick MR, Lian X, Badur MG, Han W, Delgado SM, Wakatsuki T, Crone WC， Pruitt BL和Palecek SP (2012)；底物力学对人多能干细胞生成心肌细胞收缩性的影响，国际细胞生物学杂志。Vol. 2012, pp. 1-13。
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参考文献
- Ludwig et al.（2006）人胚胎干细胞的非饲养培养。Nat Methods 3(8): 637-46。
- Ludwig et al.（2006）人类胚胎干细胞在特定条件下的衍生。生物医学工程学报，24(2):185-7。
- Chen G et al.（2011）化学定义的人类iPSC衍生和培养条件。Nat Methods 8(5): 424-9。
